激光共聚焦顯微鏡樣品制備方法介紹如下:
一、樣品準(zhǔn)備
選擇合適的樣品:選擇具有良好生物活性和顯微結(jié)構(gòu)的細(xì)胞或組織樣品。對于細(xì)胞樣品,可以使用活體細(xì)胞、培養(yǎng)細(xì)胞或細(xì)胞爬片等;對于組織樣品,通常需要進(jìn)行切片處理。
細(xì)胞爬片制備:對于細(xì)胞爬片,應(yīng)選擇質(zhì)量好、光潔、無雜質(zhì)的載玻片和蓋玻片,并進(jìn)行相應(yīng)的處理以確保其光學(xué)特性和無菌狀態(tài)。蓋玻片的厚度應(yīng)小于0.17mm。
二、樣品固定
化學(xué)固定:對于細(xì)胞樣品,常用的固定方法包括使用甲醛、乙醇、冰醋酸、戊醛等化學(xué)試劑進(jìn)行固定。這些化學(xué)試劑可以使細(xì)胞中的蛋白質(zhì)交聯(lián)并固定,保持細(xì)胞的形態(tài)和結(jié)構(gòu)。
液氮冷凍法:對于組織樣本,常用的固定方法是將其浸泡在緩沖福爾馬林中,然后進(jìn)行脫水和浸漬。另外,也可以采用液氮冷凍法,將新鮮組織直接放入液氮中保存。
多聚甲醛固定法:將組織塊置于4% PFA中進(jìn)行后固定,固定的時(shí)間可根據(jù)組織塊的大小和致密程度而調(diào)整。
三、滲透處理
對于某些樣品,在固定后會(huì)出現(xiàn)浸泡不透的情況,此時(shí)需要進(jìn)行滲透處理,使固定液更好地滲透進(jìn)入樣品中。常用的滲透處理方法包括冷凍冰醋酸滲透、冷凍減壓滲透、甘油滲透等。
四、處理和染色
去除雜質(zhì):使用洗滌劑(如Tween 20或Triton X-100)去除樣品中的不需要的物質(zhì),如脂肪和膽固醇等。
染色:為了增強(qiáng)對細(xì)胞或組織的觀察,通常使用DNA染料(如熒光素和硫醇葡萄糖等)進(jìn)行染色。這些染料可以與DNA結(jié)合,形成熒光信號,從而使細(xì)胞核和染色體能夠清晰可見。
五、脫水和包埋
脫水:通過逐漸加入濃度遞增的乙醇溶液,將樣品中的水分逐漸去除,使其適應(yīng)顯微鏡對環(huán)境的要求。
包埋:將樣品固定在透明塊中以便于顯微觀察。常用的包埋介質(zhì)包括瓊脂和覆蓋玻璃等。在包埋過程中,要確保樣品均勻分布在包埋劑中,以免出現(xiàn)偏移或扭曲。
六、樣品標(biāo)記
樣品需經(jīng)熒光探劑標(biāo)記,可進(jìn)行單標(biāo)、雙標(biāo)、三標(biāo)等標(biāo)記方法,以便于在激光共聚焦顯微鏡下進(jìn)行觀察。
七、切片和平片處理
切片:將包埋好的樣品切割成適當(dāng)?shù)暮穸龋ǔ閹资⒚字翈装傥⒚?。切片的方法有冰刀切片、冷凍切片、石蠟切片等。切片時(shí)需保持樣品的完整性和結(jié)構(gòu)。
平片處理:將切好的樣品平片放在載玻片上,用適當(dāng)?shù)姆椒ǎㄈ鐭崛?、冷凍、電荷吸附等)將其固定在玻片上。固定后要確保樣品牢固地固定在玻片上并保持平坦。
八、清洗和封片
清洗:處理完樣品后,要對樣品進(jìn)行適當(dāng)?shù)那逑?,去除余留的固定劑、染色劑等?/span>
封片:將處理好的樣品加入封片介質(zhì)(如卡賓膠、密封劑等),以減少光透射損失和防止樣品變干。
九、顯微鏡觀察
將制備好的樣品放入激光共聚焦顯微鏡中,調(diào)整焦距和曝光時(shí)間,進(jìn)行觀察和拍攝。
以上即為激光共聚焦顯微鏡樣品制備的詳細(xì)步驟。請注意,在進(jìn)行樣品制備時(shí),應(yīng)確保實(shí)驗(yàn)環(huán)境干凈整潔,儀器設(shè)備正常運(yùn)行,并嚴(yán)格遵循實(shí)驗(yàn)步驟和注意事項(xiàng)。